Bandwürmer beim Pferd: Welcher Test ist wirklich sinnvoll?

Seit Antikörpertests für Bandwürmer aus Blut und Speichel angeboten werden, liest man häufig, die Kotuntersuchung sei für Bandwürmer nutzlos und ein großer Teil der Pferde in Deutschland unerkannt befallen. Beides stimmt so nicht. Entscheidend ist, mit welchem Verfahren und wie viel Kot untersucht wird, und was ein Antikörpertest überhaupt misst. Auf dieser Seite haben wir die Studienlage zusammengetragen: Untersuchungen, bei denen die Bandwürmer nach der Schlachtung im Darm ausgezählt wurden, sind der einzige echte Maßstab.

Warum sind Bandwürmer beim Pferd wichtig?

Der Pferdebandwurm Anoplocephala perfoliata sitzt bevorzugt am Übergang vom Dünndarm zum Blinddarm, an der Ileozäkalklappe. Pferde nehmen ihn mit Moosmilben auf, die als Zwischenwirt im Gras leben; Dauerweiden mit hoher Besatzdichte erhöhen das Risiko (Schnieder 2006). In einer britischen Fall-Kontroll-Studie hatten Pferde mit krampfartiger Kolik deutlich häufiger Bandwürmer als gesunde Vergleichspferde; das Risiko stieg mit der Befallsstärke. Rechnerisch hingen 22 % der krampfartigen Koliken und 81 % der Ileum-Verstopfungen mit Bandwürmern zusammen (Proudman et al. 1998).

Warum sind Bandwurmeier im Kot so schwer zu finden?

Bandwürmer legen ihre Eier nicht einzeln in den Darm ab. Reife Glieder (Proglottiden) lösen sich ab, und die Eier werden erst daraus frei. Deshalb sind die Eier ungleichmäßig im Kot verteilt und oft in kleiner Zahl vorhanden. Die Zahl der Eier sagt außerdem nichts über die Zahl der Würmer: Ein Befund ist entweder positiv oder negativ (AAEP-Leitlinie). Für den Nachweis zählt deshalb vor allem zweierlei: ein anreicherndes Verfahren und eine ausreichende Kotmenge.

Welche Tests gibt es – und wie gut sind sie?

Die folgende Übersicht stützt sich, wo möglich, auf Studien mit Sektionsbefund. Nur dort ist bekannt, welche Pferde tatsächlich Bandwürmer hatten.

Verfahren	Was es nachweist	Sensitivität	Spezifität	Geprüft an
McMaster-Zählung	Eier im Kot	unter 10 %, in einer Studie 3,5 %	–	AAEP-Leitlinie; Tomczuk et al. 2014 (Sektion, Polen)
Einfache Flotation (Kochsalz)	Eier im Kot	20,7 %	–	Tomczuk et al. 2014
Kombinierte Sedimentation-Flotation (50 g Kot)	Eier im Kot	58,3 % aller befallenen Pferde, 72,4 % der Pferde mit reifen Bandwürmern; nachweisbar ab 9 reifen Würmern	–	Tomczuk et al. 2014, 487 Schlachtpferde
Zentrifugations-Anreicherung (40 g Kot)	Eier im Kot	61 %; ab 20 Würmern 92 %	98 %	Proudman & Edwards 1992, 80 Pferde
Antikörper-ELISA aus Blut	Antikörper gegen Bandwurm-Antigen	68–70 %	95 % (wurmfreie Pferde)	Proudman & Trees 1996; Skotarek et al. 2010
Antikörper-ELISA aus Speichel	Antikörper gegen Bandwurm-Antigen	83 %	85 %	Lightbody et al. 2016, 104 Schlachtpferde (Studie des Herstellers)
Antigen-ELISA aus Kot (Forschung)	Bandwurm-Eiweiß im Kot	74 %	92 %	Skotarek et al. 2010; nicht im Handel

Zwei Dinge fallen auf. Erstens schwankt die Kotuntersuchung je nach Verfahren zwischen 3 % und über 70 %. Wer sagt, die Kotuntersuchung finde keine Bandwürmer, meint meist die einfache Flotation oder die McMaster-Zählung. Zweitens sind die Antikörpertests nicht empfindlicher als eine gute Anreicherung, haben aber eine deutlich niedrigere Spezifität: Beim Speicheltest werden 15 von 100 bandwurmfreien Pferden positiv getestet.

Was zeigt ein Antikörpertest – und was nicht?

Ein Antikörpertest misst die Abwehrreaktion des Pferdes, nicht den Wurm. Das hat Folgen:

• Antikörper bleiben nach der Behandlung bestehen. Die amerikanische Pferdetierärzte-Vereinigung AAEP weist darauf hin, dass Pferde nach einer Behandlung monatelang positiv bleiben können und die Tests eher den Kontakt als den aktuellen Befall anzeigen können (AAEP-Leitlinie; Abbott et al. 2008). ESCCAP Deutschland nennt bis zu vier Monate falsch-positive Ergebnisse.
• Auch Pferde ohne Bandwürmer können hohe Werte haben. In einer italienischen Studie hatten vier Pferde nach erfolgreicher Behandlung und drei Pferde ohne Bandwurmnachweis in Kot und PCR hohe Antikörperwerte (Traversa et al. 2008). Eine Übersichtsarbeit nennt genau das als Hauptproblem der Antikörpertests (Andersen et al. 2013).
• Der Speicheltest ist nur vom Hersteller validiert. Die AAEP bezeichnet Blut- und Speicheltest als validiert. Die einzige Prüfung des Speicheltests gegen Sektionsbefunde stammt aber von den Entwicklern des Tests selbst (Lightbody et al. 2016). Eine unabhängige Validierung gegen Sektionsbefunde haben wir in der Literatur nicht gefunden.

Was bedeuten 85 % Spezifität in der Praxis?

Wie verlässlich ein positives Ergebnis ist, hängt davon ab, wie viele Pferde wirklich befallen sind. In zwei unabhängigen Schlachthofstudien hatten 7,4 % von 487 Pferden in Polen (Tomczuk et al. 2014) und 31 von über 400 Pferden in Kanada (Skotarek et al. 2010) Bandwürmer. Rechnet man mit den Herstellerangaben des Speicheltests (83 % Sensitivität, 85 % Spezifität):

Anteil wirklich befallener Pferde	davon positiv erkannt	falsch positiv unter den gesunden	Anteil richtiger unter allen positiven Ergebnissen
10 von 100	8,3	13,5	rund 38 %
20 von 100	16,6	12,0	rund 58 %

Bei einem Befall von 10 % ist also nur etwa jedes dritte positive Ergebnis richtig. Ein positiver Speicheltest allein ist deshalb kein Beweis für einen aktuellen Bandwurmbefall.

Wie belastbar sind die hohen Befallszahlen aus Antikörperstudien?

Mehrere neuere Studien berichten mit Antikörpertests von sehr hohen Befallsraten, während im Kot derselben Pferde kaum Bandwurmeier gefunden wurden:

Studie	Pferde	Kot positiv	Blut positiv	Speichel positiv
Berlin/Brandenburg (Jürgenschellert et al. 2020)	484	0,6 %	16,2 %	29,5 %
Slowakei (Burcáková et al. 2023)	427	2,0 %	39,4 %	57,0 %
sechs Bundesländer (Schmidt et al. 2026)	rund 970	0,7 %	11,0 %	20,1 %
Italien (Buono et al. 2026)	173	2,9 %	21,4 % über der Behandlungsschwelle	–

Diese Zahlen sind mit Vorsicht zu lesen. In keiner der Studien wurde mit einem Sektionsbefund geprüft, welche Pferde tatsächlich Bandwürmer hatten; verglichen wurden nur Tests untereinander. Blut- und Speicheltest weichen dabei teils um fast das Doppelte voneinander ab. In allen vier Studien waren Mitarbeiter des Testherstellers Mitautoren; in der Berliner Studie stellte der Hersteller die Probenkits und führte die Antikörpertests selbst durch, in zwei Studien war zusätzlich ein Hersteller von Wurmmitteln beteiligt. Das ist in den Artikeln offen angegeben und kein Vorwurf, gehört aber zur Einordnung.

Zum Vergleich: In den unabhängigen Schlachthofstudien mit Sektion lag der tatsächliche Befall bei rund 7–8 %. Die Pferdepopulationen sind nicht direkt vergleichbar, der Abstand zu 20–57 % „positiv“ ist aber groß.

Warum wir keinen Speicheltest anbieten

Wir werden regelmäßig gefragt, ob wir auch den Bandwurmtest aus dem Speichel anbieten. Wir haben uns bewusst dagegen entschieden und setzen auf die kombinierte Sedimentation-Flotation. Unsere Gründe:

1. Die Datenlage reicht uns nicht. Die einzige Prüfung gegen Sektionsbefunde stammt vom Hersteller selbst, an 104 Schlachtpferden aus einem Schlachthof. Für ein Verfahren, nach dem Pferde behandelt werden sollen, erwarten wir eine unabhängige Bestätigung.
2. Zu viele falsch positive Ergebnisse. Bei 85 % Spezifität und einem realistischen Befall von etwa 10 % wären rund zwei von drei positiven Ergebnissen falsch. Das führt zu Behandlungen ohne Befall, also genau zu dem, was die gezielte Entwurmung vermeiden will.
3. Keine Erfolgskontrolle möglich. Weil Antikörper nach der Behandlung monatelang bestehen bleiben können, sagt ein Antikörpertest kurz nach einer Wurmkur nichts darüber, ob sie gewirkt hat. Mit der Kotuntersuchung lässt sich das prüfen.
4. Die Kotprobe kann mehr. In derselben Probe bestimmen wir die Eizahl der Strongyliden für die selektive Entwurmung, suchen Spulwurm-, Bandwurm- und andere Eier und auf Wunsch Lungenwurmlarven. Ein Bandwurm-Antikörpertest beantwortet nur eine einzige Frage.
5. Die Sedimentation-Flotation ist belegt. In unabhängigen Sektionsstudien fand sie rund 90 % der stärkeren Befälle, die für Koliken relevant sind, bei 98 % Spezifität (Proudman & Edwards 1992; Tomczuk et al. 2014). Wir arbeiten dabei mit derselben Kotmenge wie diese Studien: 50 g pro Pferd.

Sollte es künftig unabhängige Studien geben, die Antikörpertests aus Speichel gegen Sektionsbefunde bestätigen, prüfen wir unsere Entscheidung neu.

Was empfehlen wir für die Routine?

• Kotuntersuchung mit kombinierter Sedimentation-Flotation statt einfacher Flotation. Sie ist Teil unserer Standarduntersuchung, im Großtier-Kit inkl. Eizählung und Lungenwurmnachweis (74,99 €) ebenso wie in der Großtier-Basis (34,99 €).
• Genug Kot untersuchen: In den Studien mit guter Trefferquote wurden 40–50 g Kot untersucht. Wir setzen beim Pferd 50 g Kot in die kombinierte Sedimentation-Flotation ein, also genau diese Menge. Bitte schicken Sie deshalb etwa 50 g, gesammelt an drei Tagen.
• Jedes Pferd einzeln untersuchen lassen, besonders wenn gleichzeitig die Eizahl der Strongyliden für die selektive Entwurmung bestimmt wird.
• Einen negativen Befund richtig lesen: Leichte Befälle können übersehen werden. ESCCAP Deutschland empfiehlt, Bandwürmer in der Regel einmal im Jahr zu behandeln, bei hohem Infektionsdruck zusätzlich im Sommer. Wann und womit, legt Ihre Tierarztpraxis fest.
• Antikörpertests können im Einzelfall eine Ergänzung sein. Ein positives Ergebnis allein rechtfertigt aber keine Aussage über einen aktuellen Befall, besonders nicht kurz nach einer Behandlung.

Mehr zur Kotprobe beim Pferd: Kotprobe vom Pferd einschicken · Selektive Entwurmung beim Pferd

Häufige Fragen zu Bandwürmern beim Pferd

Quellen

• American Association of Equine Practitioners. Internal parasite control guidelines, Abschnitt 3.5: Tapeworms (darin Abbott et al. 2008; Slocombe 2006). https://aaep.org/resource/internal-parasite-control-guidelines/. Zugegriffen am 10.11.2026.
• Andersen UV, Howe DK, Olsen SN, Nielsen MK. Recent advances in diagnosing pathogenic equine gastrointestinal helminths: the challenge of prepatent detection. Vet Parasitol. 2013;192:1–9. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2012.11.003
• Buono F, Castaldo E, Scarcelli S, Piantedosi D, Oliveto G, Sgroi G, Lightbody KL, Peczak N, Engeham S, Lambert PA, Matthews JB, Veneziano V. A study on the prevalence of cyathostomin and Anoplocephala perfoliata infections in Italian horses. J Equine Vet Sci. 2026;157:105763. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2025.105763
• Burcáková L, Königová A, Kuzmina TA, Austin CJ, Matthews JB, Lightbody KL, Peczak NA, Syrota Y, Várady M. Equine tapeworm (Anoplocephala spp.) infection: evaluation of saliva- and serum-based antibody detection methods and risk factor analysis in Slovak horse populations. Parasitol Res. 2023;122:3037–3052. https://doi.org/10.1007/s00436-023-07994-1
• ESCCAP Deutschland. ESCCAP informiert: Bandwurmbefall beim Pferd. Stand Dezember 2023. https://esccap.de/esccap-informiert-bandwurmbefall-beim-pferd. Zugegriffen am 10.11.2026.
• Jürgenschellert L, Krücken J, Austin CJ, Lightbody KL, Bousquet E, von Samson-Himmelstjerna G. Investigations on the occurrence of tapeworm infections in German horse populations with comparison of different antibody detection methods based on saliva and serum samples. Parasit Vectors. 2020;13:462. https://doi.org/10.1186/s13071-020-04318-5
• Lightbody KL, Davis PJ, Austin CJ. Validation of a novel saliva-based ELISA test for diagnosing tapeworm burden in horses. Vet Clin Pathol. 2016;45:335–346. https://doi.org/10.1111/vcp.12364
• Proudman CJ, Edwards GB. Validation of a centrifugation/flotation technique for the diagnosis of equine cestodiasis. Vet Rec. 1992;131:71–72. https://doi.org/10.1136/vr.131.4.71
• Proudman CJ, Trees AJ. Use of excretory/secretory antigens for the serodiagnosis of Anoplocephala perfoliata cestodosis. Vet Parasitol. 1996;61:239–247. https://doi.org/10.1016/0304-4017(95)00837-3
• Proudman CJ, French NP, Trees AJ. Tapeworm infection is a significant risk factor for spasmodic colic and ileal impaction colic in the horse. Equine Vet J. 1998;30:194–199. https://doi.org/10.1111/j.2042-3306.1998.tb04487.x
• Schmidt JS, Krücken J, Matthews JB, Austin CJ, Lightbody KL, Bartz J, von Samson-Himmelstjerna G. High proportion of horses in Germany positive for antibodies against Anoplocephalidae. Parasit Vectors. 2026;19:463. https://doi.org/10.1186/s13071-026-07731-4
• Skotarek SL, Colwell DD, Goater CP. Evaluation of diagnostic techniques for Anoplocephala perfoliata in horses from Alberta, Canada. Vet Parasitol. 2010;172:249–255. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2010.05.005
• Tomczuk K, Kostro K, Szczepaniak KO, Grzybek M, Studzińska M, Demkowska-Kutrzepa M, Roczeń-Karczmarz M. Comparison of the sensitivity of coprological methods in detecting Anoplocephala perfoliata invasions. Parasitol Res. 2014;113:2401–2406. https://doi.org/10.1007/s00436-014-3919-4
• Traversa D, Fichi G, Campigli M, Rondolotti A, Iorio R, Proudman CJ, Pellegrini D, Perrucci S. A comparison of coprological, serological and molecular methods for the diagnosis of horse infection with Anoplocephala perfoliata. Vet Parasitol. 2008;152:271–277. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2007.12.032
• Zahler-Rinder M, von Samson-Himmelstjerna G, Rehbein S. Parasitosen der Einhufer. In: Schnieder T, Hrsg. Veterinärmedizinische Parasitologie. 6. Aufl. Stuttgart: Parey; 2006. S. 293–358 (Bandwürmer S. 306–309).

Fachlich geprüft durch Dr. med. vet. Malek J. Hallinger, Geschäftsführer & Fachtierarzt für Reptilien, exomed GmbH, Marburg.