Parasiten bei Schlangen: Kotuntersuchung, Würmer, Kryptosporidien und Milben

Von Dr. med. vet. Malek J. Hallinger, Fachtierarzt für Reptilien, Laborleiter der exomed GmbH – Veterinärlabor, Marburg · Zuletzt aktualisiert: November 2026

Lesezeit: ca. 18 Minuten

Parasiten bei Schlangen sind Würmer, Einzeller und Milben, die Heimtierschlangen oft lange ohne Krankheitszeichen befallen und im Terrarium zu schweren, teils tödlichen Erkrankungen führen können. Betroffen sind Nachzuchten wie Wildfänge, besonders Neuzugänge, Zuchttiere und Schlangen mit Gewichtsverlust oder Hochwürgen. Klarheit bringt eine Kotuntersuchung in einem auf Reptilien spezialisierten Labor, bei Verdacht ergänzt durch einen Kryptosporidien-Test.

Dieser Ratgeber erklärt, welche Parasiten im Schlangenkot gefunden werden, welche Funde harmlos sind, wann ein Kryptosporidien-Test sinnvoll ist und wie Halter eine Kotprobe ihrer Schlange selbst einsenden. Die Zahlen stammen überwiegend aus einer eigenen Studie der exomed GmbH.

Wie häufig haben Schlangen Parasiten?

Etwa jede siebte Kotprobe von Heimtierschlangen in Deutschland enthält Parasiten. Das zeigt eine Studie, die die exomed GmbH gemeinsam mit dem Institut für Parasitologie der Justus-Liebig-Universität Gießen durchgeführt hat: Von Oktober 2015 bis Januar 2019 wurden im exomed-Labor 586 Kotproben von 71 Schlangenarten aus Privathaltungen und Zoos untersucht. In 86 von 571 auswertbaren Proben (rund 15 %) fanden sich Parasiten aus 20 verschiedenen Gattungen bzw. Gruppen (Hallinger et al. 2020).

Schlangenfamilie (exomed-Studie, Hallinger et al. 2020)	untersuchte Kotproben	davon positiv
Pythons (Pythonidae)	285	11,4 %
Nattern (Colubridae)	221	14,7 %
Boas (Boidae)	49	18,8 %
Vipern (Viperidae)	9	44,4 %

Bei Vipern und weiteren kleinen Gruppen war die Zahl der Proben gering; ihre Prozentwerte sind deshalb nur eingeschränkt aussagekräftig.

Zusätzlich wurden 63 verstorbene Schlangen vollständig seziert. Gut jede fünfte Schlange (22,2 %) war mit Endoparasiten befallen, und bei 8 Tieren (12,7 %) war eine Parasitose die Todesursache, unter anderem durch Amöben, Flagellaten, Kryptosporidien und Kalicephalus. Häufigere Todesursachen waren bakterielle Infektionen (30,2 %), Virusinfektionen (12,7 %) und Gicht (11,1 %) (Hallinger et al. 2020).

Die Befallsraten liegen deutlich unter denen älterer Studien an Wildfängen; eine in der exomed-Studie zitierte Untersuchung an Wildschlangen in Indien fand bei 88 % der Tiere Parasiten. Das spricht für gute Haltungsbedingungen und den hohen Anteil an Nachzuchten in Deutschland. Ein Befall bleibt trotzdem kein Ausnahmefall und kann tödlich enden.

Eine weitere Laborstatistik aus den Jahren 2003 bis 2005 fand bei Riesenschlangen Kalicephalus in 8,6 % und Rhabdias/Strongyloides in 10 % der Proben, aber in über 40 % harmlose Milben aus den Futternagern (Pantchev 2009). Ein Kotbefund bei der Schlange muss deshalb fachkundig bewertet werden.

Welche Parasiten kommen bei Schlangen vor? Überblick

Erreger	Typische Symptome	Nachweis	Übertragbar auf Menschen
Hakenwurm Kalicephalus	Futterverweigerung, Abmagerung, blutige Darmentzündung	Eier im Kot (Parasitologische Untersuchung)	nein
Fadenwürmer Strongyloides, Rhabdias	Durchfall; bei Rhabdias Röcheln, Maulatmung, Schleim	Eier oder Larven in frischem Kot, ggf. Trachealspülung	nein
Spulwürmer Ophidascaris, Polydelphis	Erbrechen, Abmagerung, Darmverschluss	Eier im Kot	nein
Bandwürmer Ophiotaenia, Kapsulotaenia, Bothridium	Abmagerung ohne erkennbaren Grund	Eier im Nativausstrich	nein
Zungenwürmer Armillifer, Porocephalus	Atemprobleme, Lungenentzündung	Eier im Kot oder Rachenabstrich	ja, selten (vor allem Wildfänge)
Amöbe Entamoeba invadens	blutig-schleimiger Kot, Erbrechen, rascher Verfall	Zysten im Kot (Nativ- und Jodpräparat)	nein
Flagellaten (z. B. Monocercomonas)	meist keine; bei Stress Durchfall	sehr frischer Kot, Nativausstrich	nein
Cryptosporidium serpentis	Hochwürgen 3–4 Tage nach der Fütterung, Verdickung in der Körpermitte	Spezialtest: Färbung, Immunfluoreszenz	nein (Schlangenart)
Schlangenmilbe Ophionyssus natricis	Baden, raue Haut, Häutungsstörungen, Blutarmut	Milben in 70%igem Alkohol	ja, vorübergehend juckende Hautreizung

Welche Würmer haben Schlangen?

Hakenwurm Kalicephalus

Der Hakenwurm Kalicephalus war in der exomed-Studie der häufigste Wurm bei Schlangen (3,3 % der Kotproben; Hallinger et al. 2020). Kalicephalus hat eine bezahnte Mundkapsel, mit der er sich in die Schleimhaut von Speiseröhre, Magen und Dünndarm verbeißt; er kommt bei Schlangen aller Familien vor. Die Ansteckung erfolgt direkt, vor allem über mit Kot verschmutztes Trinkwasser. Bei starkem Befall verweigert die Schlange das Futter, magert ab und entwickelt eine blutige Darmentzündung, an die sich bakterielle Infektionen anschließen können. Im Kot finden sich Eier im frühen Furchungsstadium, gelegentlich auch im Speichel (Beck & Pantchev 2013). Häufiger Wasserwechsel ist die wichtigste Vorbeugung.

Strongyloides und Rhabdias

Die Fadenwürmer Strongyloides und Rhabdias fanden sich in der exomed-Studie in 2,6 % der Kotproben von Schlangen (Hallinger et al. 2020). Beide haben eine frei lebende Generation, die sich im Terrarium vermehren kann. Strongyloides lebt im Dünndarm, vor allem bei Boas, und verursacht Durchfall und Blutarmut. Rhabdias sitzt in der Lunge, vor allem bei Nattern und Vipern; typisch sind Maulatmung, Röcheln und Schleimbläschen an den Nasenlöchern bis hin zur Lungenentzündung (Beck & Pantchev 2013). Im Kot erscheinen embryonierte Eier oder bereits geschlüpfte Larven. Zur Unterscheidung ist frischer Kot wichtig, bei Verdacht auf Lungenwürmer ergänzend eine Trachealspülung durch die Tierarztpraxis.

Spulwürmer (Ophidascaris, Polydelphis)

Spulwürmer der Schlangen (Ophidascaris, Polydelphis) werden bis zu 17 cm lang und gelangen über Nager oder Amphibien als Zwischenwirte in die Schlange. Sie bohren sich in die Magen- und Darmwand und können Geschwüre, Darmdurchbrüche und Darmverschluss verursachen; die Tiere erbrechen und magern ab. Die dickschaligen, runden Eier sind in der Kotuntersuchung gut nachweisbar (Kutzer & Grünberg 1965). Neuinfektionen im Terrarium entstehen vermutlich, wenn verweigerte Futtertiere aufbewahrt und später erneut angeboten werden.

Haarwürmer (Capillaria)

Haarwürmer (Capillaria) kommen bei Schlangen vor allem bei Pythons und Boas vor und waren in der exomed-Studie in 0,7 % der Proben nachweisbar (Hallinger et al. 2020); ihre krankmachende Bedeutung ist nicht abschließend geklärt. Haarwurm-Eier im Schlangenkot stammen oft gar nicht von einem Schlangenparasiten, sondern aus der Leber gefressener Mäuse (Calodium hepaticum). Diese Darmpassanten werden nicht behandelt.

Bandwürmer (Ophiotaenia, Kapsulotaenia, Bothridium)

Bandwürmer der Schlangen entwickeln sich über Kleinkrebse, Amphibien oder andere Zwischenwirte und entziehen der Schlange Nährstoffe; typisch ist eine Abmagerung ohne erkennbaren Grund. Ophiotaenia und verwandte Gattungen wie Kapsulotaenia (in der exomed-Studie 0,9 % der Proben; Hallinger et al. 2020) finden sich vor allem bei Königspythons und anderen afrikanischen Schlangen, Bothridium bei Pythons. Ihre Eier werden besser im Nativausstrich als in der Flotation gefunden und müssen von ähnlichen Bandwurmeiern aus Futtermäusen (Hymenolepis) abgegrenzt werden (Beck & Pantchev 2013). Das ist wichtig, weil bei Boas nach Bandwurmmitteln Unverträglichkeiten bis hin zu Todesfällen beschrieben sind (Schaller 1984). Schlangen sollten deshalb nicht vorsorglich entwurmt werden.

Zungenwürmer (Pentastomiden): Zoonose beachten

Zungenwürmer (Pentastomiden) sind wurmförmige, mit den Krebstieren verwandte Parasiten der Schlangenlunge, die auch Menschen infizieren können. Armillifer (Pythons, Puffottern, Kobras) und Porocephalus (Klapperschlangen, Boas) verursachen Schleimbildung, Atemprobleme und Lungenentzündungen. Ihre Eier enthalten eine Larve mit Klauen und sind im Kot oder Rachenabstrich nachweisbar. In der exomed-Studie waren nur 0,5 % der Proben betroffen (Hallinger et al. 2020); das Risiko betrifft vor allem Wildfänge. Menschen infizieren sich, wenn sie Eier aus Kot oder Maulschleim verschlucken (Pantchev & Tappe 2011). Händewaschen nach der Terrarienarbeit ist deshalb Pflicht. Die Behandlung gehört in erfahrene Hände, weil absterbende Parasiten eine Blutvergiftung auslösen können.

Welche Einzeller befallen Schlangen?

Amöben (Entamoeba invadens)

Die Amöbe Entamoeba invadens ist einer der gefährlichsten Parasiten der Schlangen. In einer großen Sektionsauswertung war die Amöbenruhr bei 14 % der untersuchten Schlangen die Todesursache, meist zusammen mit einer bakteriellen Infektion (Ippen 1992); in der exomed-Studie fanden sich Amöben in 1,4 % der Kotproben (Hallinger et al. 2020). Bei Schlangen kommt es zu blutig-schleimigem Kot, Erbrechen und Abmagerung, die Krankheit verläuft häufig innerhalb von Wochen tödlich. Schildkröten scheiden die Zysten oft symptomlos aus und stecken so andere Reptilien an. Schlangen sollten daher nie gemeinsam mit Schildkröten gehalten werden, und Gerätschaften wie Pinzetten oder Wasserschalen sollten nicht zwischen beiden geteilt werden. Der Nachweis erfolgt im Nativausstrich und im jodgefärbten Kotausstrich.

Flagellaten (Monocercomonas)

Geißeltierchen (Flagellaten) wie Monocercomonas kommen auch bei gesunden Schlangen vor und werden meist erst bei Stress oder falschen Temperaturen krankhaft. In der exomed-Studie wurden Flagellaten in 2,3 % der Kotproben nachgewiesen, Monocercomonas in 1,9 %; bei einer sezierten Schlange war eine Monocercomonadose die Todesursache (Hallinger et al. 2020). Für den Nachweis im Nativausstrich muss der Kot sehr frisch sein.

Kryptosporidien bei Schlangen: Symptome und welcher Test?

Cryptosporidium serpentis ist ein Einzeller, der bei Schlangen die Magenschleimhaut befällt und eine chronische Magenentzündung verursacht. Typisch ist das Hochwürgen des Futtertiers etwa drei bis vier Tage nach der Fütterung, oft zusammen mit einer sichtbaren Verdickung in der Körpermitte und fortschreitender Abmagerung. Anders als bei Säugetieren heilt die Infektion nicht von selbst aus. Gefährlich sind symptomlose Träger, die über lange Zeit geringe Mengen Oozysten ausscheiden (Beck & Pantchev 2013).

Welcher Kryptosporidien-Test ist bei Schlangen sinnvoll? Eine einzelne Kotprobe ist bei Schlangen oft negativ, weil Schlangen selten Kot absetzen und die Oozysten nur zeitweise ausscheiden. Am empfindlichsten ist eine Magenspülung, die die Tierarztpraxis spätestens drei Tage nach der Fütterung durchführt; danach folgen hochgewürgtes Futter und zuletzt Kot (Beck & Pantchev 2013). Wie stark das Ergebnis von der Methode abhängt, zeigt die exomed-Studie: Die einfache Mikroskopie fand Kryptosporidien in 0,2 % der Proben, die Karbolfuchsin-Färbung in 1,4 %, die Immunfluoreszenz in 5,2 % und der Antigen-ELISA in 12,2 % (Hallinger et al. 2020). Die Werte stammen aus unterschiedlich großen Teilgruppen und sind nicht direkt vergleichbar; sie zeigen aber, dass eine Routine-Kotuntersuchung die meisten Infektionen übersieht.

Die exomed GmbH empfiehlt deshalb den Immunfluoreszenztest, im Kryptosporidienprofil kombiniert mit der Karbolfuchsin-Färbung. Er hat das beste Preis-Leistungs-Verhältnis; eine PCR ist für die Diagnose in der Regel nicht nötig. Nur im Einzelfall kann eine PCR mit Differenzierung klären, ob nachgewiesene Kryptosporidien von verfütterten Mäusen stammen (C. muris, C. parvum), die die Schlange nur passiert haben. Mit einem einzelnen Test lassen sich Kryptosporidien nicht sicher nachweisen; bei begründetem Verdacht wird wiederholt untersucht. Mehr zu den Testverfahren im Artikel Kryptosporidien bei Reptilien – welcher Test ist sinnvoll?.

Für den Immunfluoreszenztest verwenden wir MERIFLUOR Cryptosporidium/Giardia von Meridian Bioscience. Der Test markiert die Oozysten mit fluoreszierenden Antikörpern und dient in Vergleichsstudien als Referenzmethode, an der andere Verfahren gemessen werden (Johnston et al. 2003; Garcia & Shimizu 1997). Details zu allen Verfahren: Kryptosporidien bei Reptilien – welcher Test ist sinnvoll?

Was im Schlangenkot stammt aus dem Futtertier?

Schlangen fressen ganze Beutetiere und scheiden deren Parasiten mit dem Kot aus, ohne selbst befallen zu sein. Solche Darmpassanten (Pseudoparasiten) sind bei Riesenschlangen und Nattern sogar häufiger als echte Schlangenparasiten (Pantchev 2009). Ihre Abgrenzung entscheidet darüber, ob eine Behandlung nötig ist, und ist ein wesentlicher Grund, Schlangenkot in einem auf Reptilien spezialisierten Labor untersuchen zu lassen. Typisch sind:

Fund im Schlangenkot	Herkunft	Kann verwechselt werden mit
Haarmilben und deren Eier (Myobia, Myocoptes)	Futtermäuse	Zungenwurm-Eiern
Oxyuren-Eier (Syphacia, Aspiculuris)	Futtermäuse, Ratten	Schlangenwürmern
Bandwurmeier (Hymenolepis)	Futternager	Ophiotaenia
Haarwurm-Eier (Calodium hepaticum)	Leber der Futtermäuse	Schlangen-Kapillarien
Kokzidien (Eimeria)	Futternager	Schlangen-Kokzidien
Kryptosporidien (C. muris, C. parvum)	Futtertiere	C. serpentis

Diese Funde sind kein Grund zur Behandlung. Bei Zweifel hilft es, einige Wochen lang parasitenfreie Futtertiere zu verfüttern und den Kot danach erneut zu untersuchen. Verschwinden die Stadien, waren es Darmpassanten.

Woran erkennt man Schlangenmilben?

Die Schlangenmilbe Ophionyssus natricis ist die häufigste Außenparasitose der Schlangen und befällt auch Echsen. Die Milben sind bis 1 mm groß, nüchtern gelbbraun und nach dem Blutsaugen rot bis schwarz. Unter günstigen Bedingungen dauert die Entwicklung vom Ei zur erwachsenen Milbe nur etwa sechs Tage. Die Milben laufen bis zu 1,8 m pro Stunde und können so in kurzer Zeit alle Terrarien eines Raumes erreichen (Beck & Pantchev 2013).

Anzeichen für Schlangenmilben:

• Die Schlange liegt auffällig lange im Wasserbecken, oft das erste Anzeichen.
• Kleine dunkle Punkte bewegen sich um die Augen, an den Mundwinkeln, unter den Schuppen und am Kinn.
• Feine weiße Pünktchen auf der Haut sind Milbenkot.
• Tote Milben treiben im Trinkwasser.
• Die Haut ist rau, Schuppen stehen ab, und die Häutung verläuft gestört.

Wird die Schlange vorsichtig über weißem Papier abgestreift, werden die Milben sichtbar.

Folgen: Auf einer stark befallenen Schlange können 10.000 bis 20.000 Milben sitzen. Der Blutverlust führt zu Blutarmut und kann tödlich sein. Die Bissstellen entzünden sich, Bakterien dringen ein. Schlangenmilben übertragen Blutparasiten und gelten als möglicher Überträger der Einschlusskörperchenkrankheit (IBD) bei Boas und Pythons.

Behandlung: Der größte Teil der Schlangenmilben lebt nicht auf der Schlange, sondern im Terrarium. Behandelt werden deshalb immer alle Tiere des Bestandes und alle Terrarien, über mehrere Wochen in festen Abständen, damit nachschlüpfende Milben erfasst werden. Während der Behandlung werden Einrichtung und Bodengrund entfernt, die Tiere sitzen auf täglich gewechseltem Zeitungs- oder Küchenpapier. Heißes Wasser über 60 °C tötet alle Entwicklungsstadien. Welches Akarizid (Mittel gegen Milben) eingesetzt wird, entscheidet die Tierarztpraxis. Zwei Warnhinweise aus der Fachliteratur: Fipronil-Spray darf nie direkt auf das Tier gesprüht werden, und bei jungen Boas sind Nebenwirkungen beschrieben. Ivermectin ist für Schildkröten giftig und bei manchen Schlangen, etwa Indigonattern, problematisch (Beck & Pantchev 2013). Für Hausmittel wie Öle oder Bäder ist keine Wirkung gegen Schlangenmilben belegt; sie erreichen zudem die Milben im Terrarium nicht. Diagnose und Behandlung gehören in die Tierarztpraxis.

Vorbeugung: Neuzugänge mindestens sechs bis acht Wochen in Quarantäne halten, möglichst in einem separaten Raum, und nicht gefressene Futtertiere nie in ein anderes Terrarium bringen.

Für Menschen: Schlangenmilben können bei der Terrarienpflege auf den Menschen übergehen und juckende, gerötete Pusteln verursachen, vor allem an Armen und Rumpf (Beck & Pantchev 2013). Auf dem Menschen vermehren sie sich nicht.

Welche Symptome deuten auf Parasiten bei der Schlange hin?

Ein Parasitenbefall zeigt sich bei Schlangen oft erst spät und mit unspezifischen Zeichen. Hinweise sind:

• Gewichtsverlust oder Abmagerung trotz Fressen
• Hochwürgen (Regurgitieren) von Futter, typischerweise einige Tage nach der Fütterung
• weicher, übelriechender oder schleimiger Kot, Blut im Kot
• unverdaute Futterreste im Kot
• Verdickung in der Körpermitte (Hinweis auf Kryptosporidien)
• Atemgeräusche, Maulatmung oder Schleim an den Nasenlöchern (Hinweis auf Lungenwürmer)
• Teilnahmslosigkeit, Futterverweigerung
• langes Baden, raue Haut und Häutungsprobleme (Hinweis auf Milben)

Viele Schlangen zeigen lange gar keine Anzeichen. Eine Kotuntersuchung ist deshalb auch bei gesund wirkenden Tieren sinnvoll.

Wann sollte der Kot einer Schlange untersucht werden?

Eine Kotuntersuchung bei der Schlange ist in folgenden Situationen sinnvoll:

• bei Neuzugängen während der Quarantäne (mindestens sechs bis acht Wochen): drei Kotuntersuchungen im Abstand von etwa zwei Wochen, einschließlich Kryptosporidien-Test und Untersuchung auf Amöben
• vor der Vergesellschaftung und vor der Zucht
• bei Symptomen wie Gewichtsverlust, Futterverweigerung, Hochwürgen, auffälligem Kot oder Atemgeräuschen
• bei Wildfängen und Importtieren, die häufiger und mit anderen Parasiten befallen sind als Nachzuchten
• nach einer Behandlung als Kontrolle, ob die Parasiten beseitigt sind

Hinweise zur Eingewöhnung neuer Tiere stehen im Artikel Quarantäne bei Amphibien und Reptilien.

Häufige Fragen

Welches Labor untersucht Kotproben von Schlangen?

Die exomed GmbH in Marburg ist ein veterinärmedizinisches Speziallabor mit Schwerpunkt auf Exoten (Reptilien, Amphibien, Vögel) und Kleinsäugern und untersucht Proben von Privathaltern und Tierarztpraxen aus ganz Deutschland. Kotproben von Schlangen und anderen Reptilien untersucht das Labor auf Parasiten. Laborleiter ist Dr. med. vet. Malek J. Hallinger, Fachtierarzt für Reptilien, der an der Justus-Liebig-Universität Gießen über Darmparasiten von in Deutschland gehaltenen Reptilien und Amphibien promoviert hat (Hallinger 2020). Aus dem exomed-Labor stammen Studien zu Landschildkröten (2018), Agamen (2019), Schlangen und Amphibien (2020) sowie Chamäleons (2026).

Für Schlangen bietet exomed die Parasitologische Untersuchung (Nativausstrich und kombinierte Flotation/Sedimentation, 32,99 €), das Kryptosporidienprofil (Parasitologie, Immunfluoreszenz und Karbolfuchsin-Färbung nach Heine, 73,99 €), die Kryptosporidien-PCR mit optionaler Artdifferenzierung (70,49 €, Differenzierung 32,00 €), Gastro-Profile mit Bakteriologie, die Milbenbestimmung (30,99 €) und Sektionen an. Proben können Halter selbst oder über die Tierarztpraxis einsenden (Preise Stand 2026, inkl. MwSt.). Den Befund erhalten Sie in der Regel 3–5 Werktage nach Probeneingang; Profile mit bakteriologischer Untersuchung oder Spezialtests können länger dauern. Der Befund kommt per E-Mail.

Kotprobe von der Schlange untersuchen lassen

Für Neuzugänge in der Quarantäne, vor Vergesellschaftung und Zucht, bei Gewichtsverlust, Futterverweigerung, Hochwürgen oder auffälligem Kot und nach einer Behandlung ist die parasitologische Kotuntersuchung der passende Test; bei Schlangen genügt ein einzelner frischer Kotballen. Kryptosporidien werden nur mit einem eigenen Test erkannt: empfohlen ist der Immunfluoreszenztest, im Kryptosporidienprofil kombiniert mit der Färbung. Wegen der zeitweisen Ausscheidung schließt kein Einzeltest eine Infektion sicher aus.

Einen Überblick über alle Untersuchungen für Reptilien gibt die Seite Reptilienlabor.

Kryptosporidienprofil und Spezialproben mit dem Einsendeschein

Für das Kryptosporidienprofil, Erbrochenes, Magenspülproben und Milben gibt es kein Kit. So füllen Sie den Einsendeschein aus:

1. Den Einsendeschein Reptilien (PDF) herunterladen und ausdrucken.
2. Einsender ausfüllen; bei „Rechnung an“ „Besitzer/Tierhalter“, bei der Übermittlung von Befund und Rechnung „E-Mail (bevorzugt)“ und bei der Bezahlung „Rechnung per E-Mail (bevorzugt)“ ankreuzen (Rechnung per Post: 0,99 Euro Versand zusätzlich).
3. Tier: Art möglichst genau (z. B. „Kornnatter“, „Königspython“), Geschlecht, Lebensalter, „lebend“.
4. Probenmaterial: „Tag der Probenentnahme“ eintragen; unter „Art des Probenmaterials“ „Kotprobe“ ankreuzen oder „Sonstiges:“ mit „Erbrochenes“, „Magenspülprobe“ bzw. „Milben in Alkohol“; unter „Art der Konservierung“ z. B. „gekühlt“ oder „70 % Alkohol“.
5. Anamnese/ Therapie: Symptome, Herkunft, Futtertiere, letzte Fütterung und Vorbehandlungen; „Sind weitere Tiere erkrankt/ verendet?“ mit Ja oder Nein beantworten.
6. Gewünschte Untersuchungen: „Kryptosporidienprofil (Cryptosporidium spp.) – 73,99 €“ (eine PCR, Feld „Kryptosporidien mittels PCR – 70,49 €“, ist in der Regel nicht nötig); bei Milben „Ektoparasitennachweis (Artbestimmung) / Parasitenbestimmung – 30,99 €“.
7. Unterschreiben, das Probengefäß dicht verschlossen, bruchsicher und doppelt verpacken und mit dem Formular ausreichend frankiert senden an: exomed GmbH Veterinärlabor, Gutenbergstr. 8, 35037 Marburg.

Den Befund erhalten Sie in der Regel 3–5 Werktage nach Probeneingang per E-Mail; Profile mit bakteriologischer Untersuchung oder Spezialtests können länger dauern. Magenspülproben entnimmt die Tierarztpraxis, die dasselbe Formular verwendet und dann „Rechnung an: Klinik/Praxis“ ankreuzt. Alle Formulare stehen unter Einsendeformulare.

Der Befund ersetzt nicht die Behandlung. Bei einem positiven Ergebnis legt eine reptilienkundige Tierarztpraxis das weitere Vorgehen fest; Hinweise dazu stehen unter Parasiten-Befund positiv – was tun?.

Weiterlesen

• Häufigkeit und Bedeutung von Endoparasiten bei Reptilien – Überblick über alle Reptiliengruppen
• Kryptosporidien bei Reptilien – welcher Test ist sinnvoll?
• Quarantäne bei Amphibien und Reptilien
• Desinfektion von Käfig und Terrarium
• Reptilien als Überträger von Salmonellen
• Parasiten bei Landschildkröten und Parasiten bei Bartagamen

Quellen

• Beck W, Pantchev N. Praktische Parasitologie bei Heimtieren. 2. Aufl. Hannover: Schlütersche; 2013. Kap. 9, S. 238–341 (Pseudoparasiten S. 239–246, Untersuchungsmethoden S. 247–250, Amöben S. 259–261, Kryptosporidien S. 249–251 und 270–272, Rhabdias/Strongyloides S. 282–284, Kalicephalus S. 284–286, Askariden S. 290–294, Capillaria S. 302–303, Zestoden S. 304–309, Pentastomiden S. 317–323, Schlangenmilbe S. 324–326).
• Garcia LS, Shimizu RY. Evaluation of nine immunoassay kits (enzyme immunoassay and direct fluorescence) for detection of Giardia lamblia and Cryptosporidium parvum in human fecal specimens. J Clin Microbiol. 1997;35:1526–1529. https://doi.org/10.1128/jcm.35.6.1526-1529.1997
• Hallinger MJ, Taubert A, Hermosilla C. Occurrence of Kalicephalus, Strongyloides, and Rhabdias nematodes as most common gastrointestinal parasites in captive snakes of German households and zoological gardens. Parasitol Res. 2020;119:947–956. https://doi.org/10.1007/s00436-019-06526-0 (Studie der exomed GmbH mit der JLU Gießen). https://doi.org/10.1007/s00436-019-06526-0
• Hallinger MJ. Gastrointestinale Endoparasiten von in Deutschland gehaltenen Reptilien und Amphibien. Inaugural-Dissertation, Justus-Liebig-Universität Gießen, Institut für Parasitologie. 2020.
• Ippen R. Ein Überblick über die parasitären Befunde bei Reptilien. DVG-Tagung FG Kleintierkrankheiten „Grundlagen der Reptilienmedizin“, Berlin, 17.10.1992, 33–40.
• Johnston SP, Ballard MM, Beach MJ, Causer L, Wilkins PP. Evaluation of three commercial assays for detection of Giardia and Cryptosporidium organisms in fecal specimens. J Clin Microbiol. 2003;41:623–626. https://doi.org/10.1128/JCM.41.2.623-626.2003
• Kutzer E, Grünberg W. Parasitologie und Pathologie der Spulwurmkrankheit der Schlangen. Zentralbl Veterinärmed. 1965;12:155–175.
• Pantchev N. Vorkommenshäufigkeit von Endoparasiten bei Reptilien (Schildkröten, Echsen, Schlangen) in Menschenobhut aus der Sicht eines Untersuchungslabors. Tierärztl Umsch. 2009;64:36–43.
• Pantchev N, Tappe D. Pentastomiasis and other parasitic zoonoses from reptiles and amphibians. Berl Münch Tierärztl Wochenschr. 2011;124:528–535.
• Schaller K. Droncit-Anwendung mit Todesfolge bei zwei Königsboas (Boa constrictor). Tagungsbericht der Arbeitstagung der Zootierärzte im deutschsprachigen Raum. 1984;4:96–103.